MÔI TRƯỜNG CARY BLAIR: CƠ SỞ LÝ LUẬN, CHUẨN BỊ VÀ SỬ DỤNG - SINH HỌC

Các trung bình Cary Blair là một thạch nửa rắn, được sử dụng cho việc vận chuyển và bảo tồn các mẫu sinh học chứa các mầm bệnh đường ruột, vi sinh vật và không ổn định kỵ khí. Giống như tất cả các phương tiện vận chuyển, chức năng của nó là giữ cho mẫu ở điều kiện tối ưu cho đến khi được nuôi cấy. Các vi sinh vật gây bệnh hiện diện, cũng như hệ vi sinh vật đi kèm, phải duy trì khả năng sống, nhưng không làm tăng dân số của chúng.

Cary Blair Medium là kết quả của sự thay đổi công thức của Stuart Transport Medium. Việc sửa đổi được thực hiện vào năm 1964 và bao gồm việc thay thế hệ thống điều chỉnh pH (glycerophosphat) bằng một chất đệm vô cơ được phosphat hóa.

A. Máy cấy với Cary Blair Medium B. Máy thu phân với Cary Blair Medium. Nguồn: A. Video Meganhow, lấy mẫu nuôi cấy vết thương 2011 youtube.com B. Người dùng: Mattes

Việc định dạng lại là cần thiết vì những người tạo ra nó nhận ra rằng glycerophosphat sau một thời gian nhất định có thể được chuyển hóa bởi một số vi khuẩn hoại sinh. Các mầm bệnh này nhân lên chồng chéo lên nhau.

Những thay đổi khác là loại bỏ xanh metylen, cũng như điều chỉnh lại độ pH theo hướng kiềm (pH 8,4). Tất cả những thay đổi này đã nâng cao hiệu quả của các phương tiện vận tải.

Ban đầu môi trường Cary Blair được sử dụng để duy trì các mầm bệnh đường ruột, chẳng hạn như Shigella flexneri, Salmonella sp, Vibrio cholerae và Campylobacter sp.

Tuy nhiên, hiệu quả trong việc bảo tồn khả năng tồn tại của các mầm bệnh khó tiêu và không bền, chẳng hạn như: Neisseria gonorrhoeae, Haemophilus influenzae, Neisseria meningitidis, Bordetella pertussis, Streptococcus pneumoniae và một số vi khuẩn kỵ khí, sau đó đã được nhìn thấy.

Nền tảng

Cary Blair Medium chứa natri clorua, natri thioglycollat, dinatri photphat, canxi clorua và thạch.

Natri clorua duy trì sự cân bằng thẩm thấu của môi trường, dinatri photphat và canxi clorua cân bằng độ pH. Về phần mình, natri thioglycolat duy trì khả năng oxy hóa-khử thấp, trong khi phần thạch nhỏ tạo độ đặc bán rắn.

Môi trường Cary Blair không chứa các chất dinh dưỡng, vì chức năng của môi trường vận chuyển là giữ cho mẫu không bị thay đổi về độ ẩm và tải lượng vi sinh vật; nghĩa là, nó tránh được sự mất nước của mẫu trong khi vẫn bảo toàn được khả năng sống và số lượng vi sinh vật có mặt.

Cuối cùng, độ pH hơi kiềm ngăn ngừa sự chết của vi sinh vật do tính axit, đặc biệt là Vibrios rất nhạy cảm với axit.

Sự chuẩn bị

Phương tiện Cary Blair được bán trên thị trường như một thiết bị đặc biệt sẵn sàng sử dụng. Hệ thống vận chuyển được bao phủ bởi một túi nhựa Peel Pack. Bên trong nó chứa một miếng gạc để lấy mẫu và ống chứa môi trường bán rắn của Cary Blair.

Ngoài ra trên thị trường có các nhà thương mại cung cấp môi trường khử nước để điều chế trong phòng thí nghiệm.

Để thực hiện điều này, cân 13,2 g môi trường đã khử nước và hòa tan trong một lít nước cất. Đun nóng và lắc chế phẩm cho đến khi hòa tan hoàn toàn. Phân phối môi trường trong các ống nghiệm có nắp vặn (Bakelite).

Hấp các ống trong 15 phút. Để nguội và giữ ở nhiệt độ phòng cho đến khi sử dụng.

Cary Blair Medium chưa được tiêm chủng có thể được bảo quản tối ưu lên đến 18 tháng ở nhiệt độ phòng.

PH của môi trường phải được điều chỉnh đến 8,4 ± 0,2. Màu của môi trường đã chuẩn bị là màu be, có màu trắng đục nhất định.

Sử dụng

Loại mẫu

Cary Blair Medium được sử dụng khi không thể xử lý ngay các mẫu xét nghiệm phân, tăm bông trực tràng và âm đạo.

Khi không có phương tiện vận chuyển, mẫu có thể được bảo quản ở nhiệt độ -70 ° C.

Lấy mẫu

Gạc được tẩm với mẫu và nó được đưa vào môi trường Cary Blair mà không chạm tới đáy.

Nhận dạng mẫu

Môi trường Cary Blair phải có nhãn ghi các dữ liệu cơ bản, chẳng hạn như: họ và tên của bệnh nhân, số nhận dạng của mẫu, nguồn lấy mẫu, bác sĩ điều trị, ngày và giờ lấy mẫu. lấy mẫu, chẩn đoán giả định, điều trị kháng sinh.

chuyển khoản

Đậy kín và vận chuyển ở nhiệt độ phòng trong trường hợp mẫu phân. Trong khi đó, đối với mẫu âm đạo để tìm vi sinh vật kỵ khí, nên vận chuyển mẫu ở 4 ° C.

Trong mọi trường hợp, thời gian chuyển khuyến nghị là 4-6 giờ, tối đa là 24 giờ.

Nếu nghi ngờ sự hiện diện của Campylobacter jejuni trong các mẫu phân và chúng không thể được xử lý trong vòng 24 giờ thì nên bảo quản trong môi trường Cary Blair ở 4 ° C.

Các cuộc điều tra được thực hiện trên phương tiện giao thông của Cary Blair

Một số nghiên cứu đã chỉ ra rằng môi trường Cary Blair có thể tồn tại đối với các vi sinh vật gây bệnh đường ruột thuộc giống Shigella và Salmonella trong tối đa 49 ngày sau khi lấy mẫu.

Vibrio cholerae, một mầm bệnh đường ruột quan trọng khác, có khả năng sống sót trong 22 ngày, trong khi Yersinia pestis (tác nhân gây bệnh dịch hạch và thể phổi) có thể được phục hồi sau 75 ngày.

Tuy nhiên, bất chấp độ bền đã được chứng minh về khả năng phục hồi của các vi sinh vật này, khuyến cáo rằng các mẫu được lấy phải được vận chuyển trong môi trường Cary Blair đến phòng thí nghiệm càng nhanh càng tốt.

Tương tự như vậy, khi mẫu đến phòng thí nghiệm, nó phải được gieo ngay trong môi trường nuôi cấy tương ứng.

Mặt khác, môi trường Cary Blair, ngoài việc hữu ích cho việc vận chuyển các vi sinh vật dễ nuôi, còn được khuyến cáo cho các mẫu có chứa mầm bệnh kỵ khí.

Theo nghĩa này, DeMarco và cộng sự vào năm 2017 đã thực hiện một nghiên cứu có tên: Sự tồn tại của vi sinh vật âm đạo trong ba hệ thống vận chuyển có bán trên thị trường.

Họ đã chứng minh rằng Phương tiện vận chuyển Cary Blair là phương tiện vận chuyển tốt nhất để bảo tồn và phục hồi các vi sinh vật kỵ khí âm đạo. Tương tự như vậy, họ đã chỉ ra rằng tốc độ thu hồi cao nhất đạt được khi nhiệt độ truyền là 4 ° C.

Do đó, người ta kết luận rằng nhiệt độ vận chuyển gạc âm đạo (vi sinh vật kỵ khí) nên ở 4 ° C. Trong khi đó, đối với các mẫu phân để tìm kiếm vi sinh vật sống, nhiệt độ lý tưởng là nhiệt độ phòng.

QA

Để đánh giá việc kiểm tra chất lượng môi trường vận chuyển Cary Blair các chủng đã biết như Shigella sonnei ATCC 11060, Salmonella choleraesuis ATCC 14028, Vibrio cholerae và Campylobacter sp.

Môi trường được cấy với chủng đã chọn và giữ ở nhiệt độ phòng trong 24 giờ. Sau đó chúng được gieo vào môi trường nuôi cấy tương ứng. Trong mọi trường hợp, vi sinh vật được đề cập đến đều được phục hồi một cách thỏa đáng.

Người giới thiệu

DeMarco AL, Rabe LK, Austin MN, et al. Sự tồn tại của vi sinh vật âm đạo trong ba hệ thống vận chuyển có sẵn trên thị trường. Yếm khí. Năm 2017; 45: 44–49.
Wasfy M, Oyofo B, Elgindy A, Churilla A. So sánh các phương tiện bảo quản để lưu mẫu phân. J Clin Vi sinh vật. 1995; 33 (8): 2176–2178.
Dan M, Richardson J, Miliotis MD, Koornhof HJ. So sánh phương tiện bảo quản và điều kiện đông lạnh để bảo quản tiêu bản phân. J Med Microbiol. Năm 1989; 28 (2): 151-4.
Koneman E, Allen S, Janda W, Schreckenberger P, Winn W. (2004). Chẩn đoán vi sinh. Ấn bản thứ 5. Biên tập Panamericana SA Argentina.
Forbes B, Sahm D, Weissfeld A. (2009). Chẩn đoán vi sinh Bailey & Scott. 12 ed. Biên tập Panamericana SA Argentina.
Phòng thí nghiệm Conda Pronadisa. Một nửa Cary Blair. Có tại: condalab.com
Phòng thí nghiệm Metrix. Cary Blair. Có sẵn tại: metrixlab.mx

MÔI TRƯỜNG CARY BLAIR: CƠ SỞ LÝ LUẬN, CHUẨN BỊ VÀ SỬ DỤNG - SINH HỌC - 2026